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抗犬輪狀病毒(CRV)單克隆抗體的制備與應用

瀏覽次數:211 發布日期:2025-7-1  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
一、犬輪狀病毒(CRV)概述

犬輪狀病毒(Canine Rotavirus, CRV)屬于呼腸孤病毒科輪狀病毒屬,是引起幼犬腹瀉的主要病原之一,尤其對 2-6 周齡幼犬致死率較高。CRV 基因組為分節段雙鏈 RNA,其外層衣殼蛋白 VP4 和 VP7 是主要抗原蛋白,也是中和抗體的關鍵靶點。制備高特異性抗 CRV 單克隆抗體(mAb),對病毒檢測、中和機制研究及抗病毒藥物開發具有重要價值。

二、抗 CRV 單克隆抗體制備流程
(一)CRV 抗原制備與優化
  1. 病毒培養與純化

    • 細胞培養:選用 MA-104 細胞(恒河猴腎細胞),用含 1 μg/mL 胰酶的 MEM 培養基培養 CRV(如 A79/10 株),37℃吸附 1 小時后,換無血清培養基繼續培養 48-72 小時,收集含病毒的上清液。
    • 純化工藝: 
      • 超速離心法:上清液經 4℃ 100,000×g 離心 2 小時,沉淀用 Tris-HCl 緩沖液重懸;
      • 蔗糖密度梯度離心(10%-40% 蔗糖):進一步純化病毒顆粒,電鏡觀察確認完整病毒粒子(直徑約 70 nm,雙層衣殼結構)。
  2. 抗原組分篩選

    • VP4/VP7 蛋白表達:克隆 CRV VP4(47 kDa)和 VP7(38 kDa)基因,構建至桿狀病毒 - 昆蟲細胞表達系統(Sf9 細胞),獲得具有天然構象的重組蛋白(含糖基化修飾),通過 Ni 柱親和層析純化后,用 ELISA 篩選免疫原性強的組分(優先選擇 VP7,因其為中和抗體主要靶點)。
(二)動物免疫與效價檢測
  1. 免疫方案

    • 對象:6-8 周齡 Balb/c 小鼠(3-5 只),免疫前檢測血清背景(確保無 CRV 抗體)。
    • 程序
      ① 初次免疫:腹腔注射純化 CRV 病毒(10⁶ TCID₅₀/ 只)或重組 VP7 蛋白(50 μg / 只)+ 弗氏完全佐劑;
      ② 加強免疫:每 2 周一次,共 3 次,使用弗氏不完全佐劑;
      ③ 末次免疫:融合前 3 天,靜脈注射無佐劑抗原(病毒或蛋白),刺激脾細胞活化。
  2. 效價監測

    • 末次免疫后 7 天,采集小鼠血清,以 CRV 病毒或 VP7 蛋白包被 ELISA 板(1 μg/mL),檢測抗體效價,選擇效價≥1:50,000 且能中和 CRV 感染的小鼠(中和試驗效價≥1:100)進行脾細胞提取。
(三)雜交瘤細胞構建與篩選
  1. 細胞融合

    • 取免疫小鼠脾臟制備單細胞懸液(1×10⁸個),與 SP2/0 骨髓瘤細胞按 5:1 比例混合,用 50% PEG 1500 誘導融合,接種于 HAT 培養基,7 天后換 HT 培養基篩選。
  2. 克隆篩選與鑒定

    • 初篩(間接 ELISA):以 CRV 病毒包被 96 孔板,篩選上清 OD 值≥陰性對照 2.1 倍的孔;
    • 復篩(中和試驗):對初篩陽性孔培養上清進行病毒中和試驗(在 MA-104 細胞中測定抑制 50% CPE 的抗體稀釋度,中和效價≥1:200);
    • 表位鑒定:采用 ELISA 競爭法,篩選識別不同 VP7 表位的抗體(如線性表位 vs 構象表位),優先保留構象表位抗體(中和活性更強);
    • 克隆化:有限稀釋法進行 3 次單克隆化,獲得穩定分泌中和抗體的細胞株。
(四)抗體生產與純化
  1. 腹水制備

    • 給 Balb/c 小鼠腹腔注射石蠟油預處理,7 天后接種雜交瘤細胞(1×10⁶個 / 只),7-10 天后收集腹水,4℃離心(3000 rpm,10 min),上清經 0.22 μm 濾膜過濾。
  2. 純化工藝

    • Protein G 親和層析:腹水通過 Protein G 柱純化 IgG 類抗體,洗脫液用 PBS 透析,超濾濃縮至 1-2 mg/mL;
    • 純度驗證:SDS-PAGE 檢測顯示單一 IgG 條帶,純度≥95%,Western blot 驗證其與 CRV VP7 蛋白的特異性結合。
(五)抗體功能鑒定
  1. 中和活性測定

    • 空斑減少試驗(PRNT):測定抗體抑制 CRV 在 MA-104 細胞中形成空斑的能力,計算中和效價(IC₅₀),高活性抗體 IC₅₀≤1 μg/mL;
    • 病毒吸附抑制試驗:檢測抗體是否阻斷 CRV 與細胞受體(如整合素 α₂β₁)的結合,驗證中和機制。
  2. 特異性與交叉反應

    • 種屬特異性:ELISA 檢測抗體與貓輪狀病毒(FRV)、豬輪狀病毒(PRV)的交叉反應,要求交叉反應率<5%;
    • 病毒株覆蓋性:測試抗體對 CRV 不同亞型(如 G3、G5 型)的中和活性,篩選廣譜中和抗體。
三、關鍵技術難點與解決方案
難點解決方案
CRV 培養滴度低
優化培養條件:添加胰酶(激活 VP4 蛋白切割,增強感染性),使用低血清培養基(減少蛋白干擾)
中和表位篩選困難
構建 VP7 蛋白突變體庫,通過點突變定位中和表位,優先選擇保守區域(如 G-H 環)抗體
抗體依賴性增強(ADE)風險
篩選時排除與 Fc 受體結合的抗體(如通過 FcγR 結合試驗),避免 ADE 效應(尤其用于治療時)
四、應用場景
  1. 臨床診斷

    • 膠體金層析試紙條:制備雙抗體夾心試紙條,檢測幼犬糞便中的 CRV 抗原,15 分鐘內出結果,靈敏度達 10⁴ TCID₅₀/mL,符合 OIE 診斷標準;
    • RT-PCR 輔助檢測:抗體中和預處理樣本,區分活病毒與滅活病毒,提高核酸檢測的臨床意義。
  2. 中和機制研究

    • 病毒 - 抗體共晶解析:通過 X 射線晶體學分析抗體與 VP7 的結合位點,指導廣譜中和抗體設計;
    • 病毒變異監測:用抗體檢測 CRV 流行株的抗原漂移,輔助疫苗株更新(如 VP7 基因序列與抗體中和效價關聯分析)。
  3. 治療與預防

    • 單克隆抗體療法:高中和活性抗體腹腔注射用于幼犬 CRV 感染治療,降低腹瀉發生率(動物實驗顯示保護率≥80%);
    • 抗體 - 藥物偶聯物:將抗體與 RNA 聚合酶抑制劑偶聯,靶向遞送藥物至感染細胞,抑制病毒復制(臨床前研究階段)。
五、注意事項
  1. 病毒培養安全:CRV 雖對人無致病性,但操作需在 BSL-2 實驗室進行,避免交叉污染;
  2. 抗體亞型選擇:治療用抗體優先選擇 IgG2a 亞型(小鼠來源),減少 FcγR 結合引發的 ADE 風險;
  3. 批次穩定性:腹水抗體需統一純化工藝,凍融 3 次后效價下降應≤15%;
  4. 診斷試劑標準化:建立 CRV 抗體標準品(如 WHO 參考血清),確保不同試劑盒結果可比。

抗 CRV 單克隆抗體的制備核心在于以 VP7 蛋白為靶點,結合中和試驗篩選高活性抗體,并通過表位分析提升其廣譜性。該類抗體不僅可用于 CRV 感染的快速診斷,還為幼犬輪狀病毒病的治療提供了新的生物制劑方向,具有重要的獸醫臨床價值。

 
發布者:費雪(杭州)醫學研究有限公司
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