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細胞遷移與侵襲全攻略

瀏覽次數:5414 發布日期:2019-7-3  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

 當需要進行細胞共培養、細胞趨化、細胞遷移以及細胞侵襲等研究的時候,需要在培養板上放入小室。小室內通稱上室,培養板內則稱下室,小室的底部有通透性的膜,一般常用聚碳酸酯膜(PC);根據實驗需求選擇不同孔徑的聚碳酸酯膜, 并且經過不同處理,就可以進行上述的實驗。因為聚碳酸酯膜具有通透性,下層培養液中的誘導性成分或是趨化因子,可以影響到上室內的細胞功能,不同廠家對小室的命名也不同,如Transwell、Boyden chamber、Millicell或是Thincert。
小室操作處理的步驟
Step1.選擇水凝膠類型包被小室:
水凝膠主要分為兩種:動物來源(如基質膠、膠原蛋白膠、纖維蛋白膠)或是合成型水凝膠(如Vitrogel 3DTM)。以24孔板的小室為例,取70-100μl(體積量不需太多,剛好將聚碳酸酯膜浸濕即可)稀釋好的水凝膠,均勻涂抹在小室內的膜進行包被,37℃放置1-3 h左右(時間取決于選用的水凝膠類型)。
                                               ▲細胞遷移和侵襲實驗圖示
Step2.制備細胞懸液:
將進行實驗的細胞消化下來,終止消化后離心棄去培養液,用PBS洗1-2次,用不含血清培養基將細胞重懸,并進行細胞計數,調整細胞密度至5×104/ml -5×105/ml (根據實驗決定細胞接種數量)。
Step3.接種細胞:
取100µl細胞懸液加入24孔板上層小室,24孔板下室一般加入600µl含20%FBS的培養基,避免下層培養液和小室間氣泡產生,氣泡會減弱下層培養液的趨化作用,如果不小心出現氣泡,需要將小室提起,將氣泡除去,再將小室放進培養板。
Step4.培養時間:
培養時間由實驗目的決定,如細胞共培養、細胞趨化、細胞遷移以及細胞侵襲等多種方面的研究;細胞遷移與侵襲的能力,除了培養時間需要考慮外,也需考慮細胞的處理!
Step5.結果分析:
結束培養,取出小室,移除孔中培養液,用無鈣鎂的PBS洗2-3次,使用甲醇固定15-30分鐘后,將小室適當風干。用預備好的0.1%-0.5%結晶紫染色,再用棉簽輕輕擦掉內層未遷移細胞,用PBS洗3次。在200倍或400倍顯微鏡視野下,隨機選擇五個視野拍照觀察并計數穿過膜后的細胞。
▲統計穿膜后細胞數量圖示
Reference
Transwell® Invasion Assays. Methods Mol Biol. 2011; 769:97-110
 
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標簽: 細胞遷移
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