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983 次 SR受體在內毒素清除與免疫防御中的關鍵作用 2024-3-28
雖然大量研究證實，SR在介導動脈粥樣硬化形成中發揮至關重要的作用，近年來越來越多的研究也顯示，巨噬細胞表面SR-A也是天然免疫系統中的重要受體分子，與宿主防御功能密切相關，主要表現為：（
978 次內毒素的釋放和內毒素的移位途徑簡述 2024-1-22
一、內毒素的釋放革蘭陰性桿菌菌體自溶或被裂解時釋放內毒素，但這并非是細菌釋放內毒素的惟一途徑。在革蘭陰性桿菌生長繁殖過程中，內毒素也不斷從細胞壁上脫落下來并釋放到周圍的介質中去。即
929 次內毒素在機體內的代謝過程及機體防御系統介紹 2024-1-18
在人類賴以生存的自然環境中，生活著數以萬計的微生物，它們不斷地與人體發生接觸，或黏附于皮膚表面，或被攝入消化道、吸入呼吸道，有的甚至穿越皮膚、黏膜屏障而侵入機體，與此同時，病原體的
881 次內毒素分子的跨膜轉運和O-特異多糖鏈合成的遺傳學研究 2024-1-18
一、內毒素分子的跨膜轉運LPS分子合成后從周質間隙轉運至外膜的機制不清。與磷脂的跨膜轉運不同，LPS的跨細胞外膜轉運是不可逆的。ABC轉運裝置中的MsbA可能參與LPS分子的跨膜轉運，該過程需要AT
665 次 О-特異性多糖鏈的生物合成途徑闡述 2024-1-15
O抗原的合成發生在細胞膜的胞漿面，以膜結合脂（GCL）與NDP-單糖結合為起始點，至新生O抗原在周質間隙面與core-LipidA連接成LPS為終止點。GCL又名脂質抗原載體（antigen-carrie lipid，ACL），是
698 次核心多糖的生物合成與跨膜轉運機制介紹 2024-1-15
從LipidⅣA開始，核心多糖的合成是在非還原性葡萄糖胺的C-6m´上引入KDO（核心寡聚糖）后，逐步加人庚糖和己糖。合成完整內核的酶在大腸桿菌中是由waa（rfa）基因編碼，調控機制目前仍不清
779 次 Lipid A的生物合成和遺傳學概述 2024-1-12
Lipid A的生物合成發生在細胞膜的胞漿面。既往認為Lipid A的合成起點為UDP-N-葡萄糖胺（UDP-GlcN），目前已證實真正的合成起點為UDP-N-乙酰葡萄糖胺（UDP-GlcNAc）。Lipid A的合成是在lpx基因簇
805 次內毒素的分離提取和純化方法介紹 2024-1-11
從20世紀30年代至今，根據內毒素的理化性質而設計的分離、鑒定內毒素的技術方法主要有下述幾種：一、分離提取（一）三氯醋酸法Boivin和Messrobeanu于1935年，將活菌或經冷凍干燥的大腸桿菌，在4
1926 次脂多糖LPS的穩定性介紹和化學分解作用 2024-1-10
（一）熱穩定性LPS（lipopolysaccharide，脂多糖）中性溶液在室溫放置數月，其生物學活性不發生明顯的改變，在4℃或低溫冰箱中，其生物學活性可保持數年至數十年。冷凍干燥的LPS中性粉劑，在室溫
945 次 Lipid A與一般磷脂分子在結構上的差別比較 2024-1-8
Lipid A是一種糖磷脂，它與一般磷脂分子在結構上有所差別：①一般的磷脂僅連結兩個脂肪酸并且不具有雙糖結構，而Lipid A在D氨基葡萄糖雙糖骨架上連結多個脂肪酰殘基；②Lipid A含飽和或3-羥基脂
764 次細菌內毒素的結構之Lipid A的結構闡述 2024-1-8
LipidA是一種分子量約為2000的磷脂，主要由氨基葡萄糖雙糖構成的親水性骨架和疏水性的長鏈脂肪酸兩部分組成，其結構如圖2-5所示。Lipid A是LPS中最為保守的部分、是LPS的毒性和生物活性中心，是
6088 次脂質組 LC/MS自動化鑒定及相對定量 2017-2-10
Thermo Scientific LipidSearch 軟件為脂質組學量身定制的工作流程脂質組 LC/MS自動化鑒定及相對定量脂質組學的前景脂質組學作為一門新興的研究學科，其成果對于科學家深入理解細胞生理和病理過
6814 次大鼠血脂（Lipids）ELISA試劑盒使用說明書 2016-6-2
本試劑僅供研究使用目的：本試劑盒用于測定大鼠血清，血漿及相關液體樣本中大鼠血脂（Lipids）含量。實驗原理：本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中大鼠血脂（Lipids）水平。用純化的大鼠血脂（